Рыбоводство и рыболовство

Успехи прудового рыбоводства во многом зависят от обеспечения этой отрасли полноценными кормами, Рыбохозяйственные научно-исследовательские организации осуществляют значительный объем работ, направленных на поиск дополнительных кормовых ресурсов.

Сегодня мы знакомим читателей с работами по использованию в качестве корма побегов тростника и артемии салина. Авторы статей убедительно доказывают: настало время в широких масштабах организовать централизованную заготовку и поставку хозяйствам гранулированного тростника и декапсулированных яиц артемии. Редакция поддерживает их мнение и надеется, что результаты экспериментов, проведенных учеными, послужат основой для скорейшего решения соответствующими организациями проблемы дополнительных кормов.

Богатые ресурсы

В 1981 г. мы провели эксперимент по использованию дополнительных резервов дешевых кормов. Одногектарный опытный выростной пруд Сенгилеевского рыбучастка Ставропольрыбпрома был заселен тремя видами рыб в следующие сроки: 14 июня личинками карпа — 130 тыс.; 19 июня личинками белого толстолобика — 130 тыс.; 3—11 июля мальками белого амура — 20 тыс. шт.

Таким образом, общая плотность посадки составила 280 тыс. шт/га, что превышает существующие нормативы (Козин, 1972).

По рекомендации Ю. Привезенцеза и др. (1980) личинок белого амура при выращивании (без подкормки растительностью) во всех зонах сажают на 1 га не более 10 тыс. шт. Мы же посадили не личинок, а мальков и не 10, а 20 тыс. шт. Такая увеличенная плотность посадки мальков белого амура была сделана исходя из того, что планировалась подкормка сеголетков тростниковыми гранулами.

В пруд вносили минеральные удобрения и микроэлементы. За вегетационный период израсходовано нитроаммофоса 850 кг, железоаммонийных квасцов 8 кг, марганцовокислого калия, хлористого кобальта и йодистого калия по 1,4 кг. Нормативные обоснования внесения указанных удобрений и микроэлементов даны в работах Л. Астанина и др. (1975).

Комбикорма вносили с июля по сентябрь. Всего за сезон израсходовано 3000 кг комбикормов на сумму 390 руб. Кроме того, сеголетков белого амура подкармливали гранулами, изготовленными из молодого тростника. В этих целях использовали обычный гранулятор, применяемый для получения гранул из травяной муки, соломы и т. и. Марка гранулятора ОГМ-0,8. Предварительно тростник измельчали и подсушивали с помощью теплогенератора АВМ-0,65 Ж. Всего за сезон израсходована 1 т тростниковых гранул на сумму 38 руб.

В сентябре — октябре из опытного пруда было выловлено 108,5 тыс. сеголетков общей массой 2710 кг. Рыбопродуктивность составила 27,1 ц/га. По видам сеголетки распределились следующим образом:

Затраты посадочного материала, минеральных удобрений, микроэлементов, кормов, рабочей силы, транспорта, амортизация на один гектар прудовой площади составили 1230 руб. Стоимость сеголетков — 3845 руб. Чистая прибыль с одного гектара составила 2615 руб. На 1 кг выращенной рыбы израсходовано 1,1 кг комбикорма (не считая тростниковых гранул).

Кормовая ценность тростника изучалась В. Пашкевичем и Б. Юдиным (1978). Стебли и листья молодого растения содержат 5 % чистого белка, 1,6 % сырого жира, 52,7 % безазотистых экстрактивных веществ (крахмала, сахара), много витамина С. Таким образом, тростник является ценным кормовым растением, по своим кормовым достоинствам не уступающим сену хорошего качества.

Замечено, что молодые ростки охотно обгладывает карп. Что касается белого амура, то для него молодой тростник — излюбленный корм. По данным В. Демьянко (1980), белый амур уже со второго малькового этапа (длина тела 37–41 мм) полностью переходит на питание растениями, но первоначально предпочитает мягкую водную растительность.

Наш эксперимент показал, что при отсутствии мягкой водной растительности сеголетки белого амура поедают мелко измельченный (спрессованный в гранулы) тростник и нормально растут. При анализе содержимого кишечников установлено, что у сеголетков белого амура в пищевом комке содержалось до 70 % остатков тростниковых гранул и до 30 % комбикорма, у карпа наблюдалось обратное соотношение.

Тростник в нашей стране — самое распространенное водное растение. Площади его зарослей в низовьях Волги занимают 280–290 тыс. га, на р. Кубани — 204 тыс. га, в дельте Амударьи — 300 тыс. га (Гаевскзя, 1966). Видимо, имеет смысл использовать такие богатые кормовые ресурсы для выращивания товарного белого амура.

Думается, что при кормлении белого амура молодым тростником можно значительно увеличить его «долю участия» в поликультуре. Для изучения экономической эффективности кормления двухлетков белого амура молодым тростником мы планируем провести специальные опыты.

Л. АСТАНИН,

В. МАХАНЬКО,

В. САВЕЛЬЕВ

СТАВРОПОЛЬСКИЙ СХИ

Технология, требующая широкого освоения

При искусственном разведении как морских, так пресноводных организмов, одним из наиболее популярных видов живого корма является артемия салина.

Масштабы использования артемии особенно возросли в последнее десятилетие, что связано с общей тенденцией расширения работ по аквакультуре. Несмотря на то, что мировая годовая добыча яиц превышает 100 т, потребность в них значительно большая и стоимость их держится на высоком уровне: 1 кг яиц высокого качества стоит 30–40 долларов.

В водоемах нашей страны большие запасы яиц артемии. Советские специалисты имеют богатый опыт сбора и хранения яиц, использования науплиев в кормовых целях. Однако организация сбора и хранения, а также техника очистки и инкубации яиц не всегда находятся на должном уровне. Это приводит к низкому проценту выклева науплиев.

Один из путей более рационального использования яиц артемии салина их декапсулирование (снятие наружной оболочки). Такой технологический прием упрощает инкубацию, а в некоторых случаях и заменяет ее.

Оболочка яйца артемии состоит из трех слоев: жесткого двухслойного хориона, имеющего обычно коричневый цвет, и внутренней прозрачной эмбриональной кутикулы. Хитиноподобный хорион большинством рыб и беспозвоночных практически не усваивается, но его можно легко растворять. В этом случае эмбрион остается в тонкой и мягкой кутикуле, которая легко переваривается животными.

Впервые метод декапсулирования был использован японскими учеными в 1962 г. при проведении биохимического анализа яиц. Начиная с 1977 г. в зарубежной литературе стало появляться большое количество работ, посвященных усовершенствованию метода декапсулирования яиц артемии и практическому применению их в аквакультуре (рыбоводные и креветочные питомники).

Многое в этой области сделано бельгийскими учеными, которые пропагандировали данный метод в своих статьях на различных конференциях и в школах-семинарах, заключали контракты по линии ФАО на внедрение его в странах с развивающейся аквакультурой, например, в Индонезии, Таиланде, на Филиппинах и в Бразилии. В настоящее время этот метод освоен практически во всех тех странах, где развивается аквакультура.

В нашей стране метод декапсулирования также начинает находить свое применение, в частности для подращивания личинок карпа и растительноядных рыб. В этом направлении проводят работы П. Воронов и В. Никитчук в Ростовской области, М. Яковчук в Краснодарском крае, Е. Гусев в Московской области.

Какие же преимущества дает применение метода декапсулирования яиц артемии? Прежде всего упрощается техника инкубации яиц, так как не требуется отделять науплиев от оболочек, которые растворяются при обработке. При этом уменьшается потеря яиц, сокращается ручной труд. Рыбоводы знают, какие трудности представляет процесс отделения науплиев от скорлупы и особенно от яиц, выклев из которых не состоялся. Скорлупа и невыклюнувшиеся яйца при попадании в выростные емкости с личинками рыб заглатываются ими, но не перевариваются и, заполняя кишечник, иногда вызывают массовую гибель.

Многие объекты аквакультуры (например, креветки, крабы, некоторые растительноядные рыбы, карпы) могут использовать продекапсулированные эмбрионы непосредственно в пищу, что дает возможность обойтись вообще без инкубации, а это значительно сокращает затраты на оборудование.

По сравнению с проинкубированными обычным способом эмбрионами продекапсулированные имеют несколько больший вес и более высокое содержание энергии, так как она не расходуется на разрыв хориона при выклеве. Например, калорийность продекапсулированных эмбрионов аргентинского штамма по сравнению с калорийностью необработанных повышалась на 10 %. Для некоторых штаммов артемии декапсулирование приводит к увеличению эффективности выклева науплиев. Так, для колумбийского штамма выклев после обработки яиц по сравнению с выклевом из необработанных яиц увеличивался на 60 %.

Декапсулированные эмбрионы при инкубации дают дружный выклев, а это значит, что появившиеся науплии могут находиться на одной стадии развития. Появляется возможность использования науплиев на стадии Е 1, в то время как на стадии Е 2, наступающей через несколько часов, их калорийность становится на 25 % ниже. Таким образом, одновременный выклев яиц дает значительную экономию.

Освобожденные от хориона эмбрионы практически стерильны, так как в процессе обработки находящиеся на оболочках бактерии, споры грибов и водорослей погибают.

За рубежом, в частности в США, появились фирмы, производящие сухие декапсулированные эмбрионы. При их инкубации из 1 г удается получить от 175 до 500 тыс. науплиев (в зависимости от сорта). Цена такого продукта составляет 45–70 долларов за 1 кг.

Итак, полученные после декапсулирования эмбрионы можно использовать для трех целей. Во-первых, их можно проинкубировать и полученные науплии использовать традиционным путем. Во-вторых, некоторые виды рыб и беспозвоночных могут употреблять их непосредственно. В-третьих, их можно «законсервировать» в насыщенном солевом растворе и хранить в течение нескольких месяцев, а по мере надобности проинкубировать или использовать в корм. В насыщенном солевом растворе происходит обезвоживание эмбрионов, и процессы жизнедеятельности у них приостанавливаются. Чтобы продолжить развитие эмбриона, его надо обводнить — поместить в воду с соленостью ниже 85 %.

Личинки морских рыб, обладающие ярко выраженным охотничьим инстинктом, не могут употреблять в пищу неподвижные частицы. Поэтому при разведении кефалей, камбаловых, серрановых и других видов морских рыб продекапсулированные эмбрионы обязательно должны быть проинкубированы, но декапсуляцию надо провести таким образом, чтобы жизнеспособность их сохранилась и эффективность выклева не снизилась. В данном случае нужно особо внимательно подходить к выбору декапсулирующего реагента и времени обработки.

Для декапсулирования яиц артемии используются различные реактивы: в странах Западной Европы широко распространен гипохлорит натрия, в странах Восточной Европы и Юго-Восточной Азии предпочитают гипохлорит кальция, так как там он более дешев и широко применяется для дезинфекции бассейнов, ванн и т, д.

Наша промышленность выпускает гипохлориты натрия и кальция, причем в последнем может содержаться различное количество активного хлора, в зависимости от марки. Меньше всего его содержится в хлорной извести — 36 %, в лучших марках — до 80 %. Поскольку в декапсулирующем растворе должно содержаться 2–4 % активного хлора, его можно приготовить из реактивов различных марок, но в каждом отдельном случае концентрацию активного хлора требуется предварительно определить путем титрования гипосульфитом (см. Методы гидрохимических исследований океана, «Наука», АЛ., 1978).

Согласно данным бельгийских исследователей, концентрация активного хлора в декапсулирующем растворе должна быть 4,2 %. Для того чтобы уточнить нормативы использования отечественных реактивов, нами были проведены специальные исследования.

Приводим способ приготовления декапсулирующего раствора, активность по хлору которого составляет 2,8 %.

Раствор готовится следующим образом. В 1 л воды растворить 30 г хлористого натрия, затем добавить такое количество гипохлорита кальция или натрия, чтобы количество активного хлора в нем составляло 28 г/л. Этот раствор проаэрировать в течение 10 мин и отстоять 12 ч. Жидкость, находящаяся над осадком, используется в качестве декапсулирующего раствора. В 1 л раствора можно продекапсулировать 80 г яиц.

Декапсулирование проводится так.

Яйца помещают в пресную воду на 1 ч, а затем в декапсулирующий раствор на 10–15 мин (но не более). Раствор все это время тщательно перемешивают.

После того как хорион растворится и раствор приобретет оранжевый цвет, яйца собирают в сачок и промывают в течение 10 мин в проточной воде (до полного исчезновения запаха хлора).

Для дезактивации остатков хлора сачок с эмбрионами следует несколько раз опустить в децимолярную соляную кислоту, после чего опять тщательно промыть.

Инкубация эмбрионов производится обычным способом: в растворе с соленостью 30%о при температуре 28° и сильном продувании воздухом. Инкубация длится 24–36 ч. При этом следует избегать яркого освещения, так как световой порог у декапсулированных эмбрионов значительно снижен.

Весь процесс декапсулирования должен протекать при pH выше 10 (для этой цели в декапсулирующий раствор вносят карбонат натрия).

В случае одновременной обработки значительной порции яиц температура раствора может повыситься. Поскольку при температуре выше 40° эмбрионы обработанных яиц погибают, надо следить, чтобы она не превысила этот уровень. Для понижений температуры можно использовать водяную баню с проточной холодной водой или льдом.

При обработке большого количества яиц начинают применять специальные установки (такая установка разработана в Бельгии).

В случае инкубации продекапсулированных эмбрионов эффект воздействия обработки следует оценивать не только по скорости освобождения эмбрионов от хориона, но и по проценту выклева науплиев из продекапсулированных яиц. Для контроля можно учитывать процент выклева необработанных яиц.

В наших экспериментах эффективность выклева науплиев из обработанных яиц не снижалась, а даже несколько увеличивалась. Декапсулирование проводилось раствором гипохлорита натрия с концентрацией активного хлора 2,8 %. При 10-минутной экспозиции увеличение выклева эмбрионов достигало 11 %, а при 15-минутной — 17 %. Такие же результаты получены при использовании гипохлорита кальция.

Учитывая значительную эффективность декапсулирования яиц артемии, мы считаем, что этот метод должен быть широко освоен и распространен на отечественных рыбоводных предприятиях, использующих артемию в качестве корма.

Л. СПЕКТОРОВА

ВНИРО

А. АРХИПКИН

МГУ

Подсушивание и декапсулирование яиц артемии салина

Подсушивание яиц. На месте заготовок яиц зачастую встречаются различного рода загрязнения. Наиболее опасными из них является погибшая артемия, массовое отмирание которой наблюдается в период осенней заготовки яиц. При наличии такого неотсортированного материала следует без промедления доставить его в пункт обработки или очистить на месте, иначе качество яиц может быстро снизиться.

Конечный этап обработки яиц артемии перед упаковкой — сушка. Естественная сушка протекает довольно медленно и требует больших производственных площадей. Поэтому при массовых заготовках яиц предпочтение должно быть отдано искусственному высушиванию яиц с использованием обогрева и вентиляции.

Известно, что яйца артемии весьма устойчивы к воздействию экстремальных факторов среды, в том числе к низким и высоким температурам (это относится только к хорошо высушенным яйцам).

В наших опытах сухие яйца артемии переносили многократное замораживание даже в жидком азоте, тогда как набухшие погибали. Устойчивость яиц к воздействию высоких температур также в значительной степени зависит от количества содержащейся в них влаги.

В задачу наших исследований входило установление зависимости между содержанием влаги в поступающих на искусственное высушивание яйцах артемии и температурным режимом сушки, обеспечивающим их жизнеспособность.

Высушивание при различных температурах мы проводили в термостате в течение 24 ч. Яйца раскладывали тонким слоем на фильтровальной бумаге и помещали в камеру термостата с заранее установленным температурным режимом.

Содержание влаги в яйцах артемии определялось прибором Чижовой по ГОСТ 13930 —68 при продолжительности сушки 3 мин и температуре 135°.

Контролем служили яйца той же партии, подвергнутые естественной сушке и хранящиеся в сухом помещении. Влажность контрольных яиц составляла 8 %.

При высушивании у яиц наблюдается деформация в виде заметной вмятины на поверхности. При сильной деформации яйцо напоминает полусферу. Различная интенсивность деформации может встретиться у яиц одной партии, но все же она более характерна для яиц, происходящих от различных популяций артемии. В имеющейся у нас коллекции наибольшая деформация отмечена у яиц артемии из крымского озера Сасык, наименьшая — у образцов из водоемов, расположенных на полуострове Мангышлак.

В результате проведенных исследований обнаружено, что устойчивость влажных яиц к воздействию повышенных температур не остается постоянной, она обратно пропорциональна содержанию в яйцах влаги (см. рисунок). Наши эксперименты показали, что при искусственном высушивании яиц в камерах или барабанных сушильных установках оптимальная температура должна быть в диапазоне от 45 до 60°.

Представляет интерес обнаруженный в ходе экспериментов такой факт: единичные яйца артемии при исходной влажности от 36 % и ниже, прогревавшиеся в течение суток при температуре 140°, сохраняли жизнеспособность,

В сушильные устройства обычно поступают яйца с влажностью порядка 61–64 % (содержание влаги в только что очищенных обработкой в воде яйцах). Для ускорения процесса сушки можно рекомендовать следующий температурный режим. Вначале температура в сушильных устройствах поддерживается на уровне 45°, при уменьшении содержания влаги в яйцах до 50 % и ниже температуру повышают до 55°. Следует отметить, что понижение содержания влаги до 50 % происходит быстро и выигрыш во времени весьма ощутим.

Если яйца, поступившие на сушку, имеют влажность 50 % и ниже, можно поднять температуру в начале высушивания до 56°.

Предложенный температурный режим позволит интенсифицировать процесс сушки яиц артемии и сократить время их обработки.

Декапсулированме яиц. При подращивании молоди рыб в качестве корма можно использовать декапсулированные яйца артемии салина. Таким образом, из технологии получения стартового корма выпадает трудоемкий процесс инкубации яиц артемии.

В нашей стране метод декапсуляции не нашел еще широкого признания. Это объясняется, по всей вероятности, тем, что при внедрении метода декапсуляции возникают большие трудности из-за неосведомленности практических работников отрасли относительно качества необходимых химикатов, а также незнания некоторых деталей технологии.

Декапсуляцию можно выполнить, используя препараты, содержащие активный хлор: диоксил хлора, гипохлорит натрия, гипохлорит кальция, хлорную (белильную) известь. Количество хлора определяется путем вытеснения эквивалентного количества йода из раствора иодида калия.

В таблице приводятся необходимые характеристики некоторых выпускаемых отечественной промышленностью реагентов.

В сопровождающем каждую партию химикатов паспорте завода-изготовителя указываются основные качественные характеристики веществ, в том числе содержание активного хлора. Следует отметить, что пользоваться приведенными в паспорте концентрациями активного хлора можно лишь в том случае, если продукция свежая, поскольку при длительном хранении содержание его заметно меняется.

Из приведенных в таблице химических продуктов, содержащих активный хлор, надо выбрать наиболее доступные и свежие. Не следует брать для декапсуляции побуревший или хранящийся в открытом виде гипохлорит кальция. Из марок гипохлорита натрия нужно предпочесть А и Б.

Изменение окраски гипохлорита натрия от зелено-желтой до красновато-коричневой не свидетельствует о его непригодности, но является показателем необходимости нового определения содержания активного хлора.

Осваивая декапсуляцию, рыбоводу следует научиться самостоятельно определять содержание активного хлора. Все необходимые для проведения анализа химикаты доступны практикам, поскольку входят в набор реактивов для определения кислорода методом Винклера. Ход анализа несложен и подробно описан в ГОСТ 11086—76 и различных литературных источниках, например, в «Справочнике по свойствам, методам анализа и очистке воды» (Киев, «Наукова думка», 1980).

Декапсуляция яиц артемии происходит при определенном содержании активного хлора в растворе. На наш взгляд, оптимальная концентрация активного хлора — 17 г/л. При такой концентрации и температуре около 20° декапсуляция продолжается 15 мин.

Если выполнение анализа на содержание активного хлора не представляется возможным, следует произвести пробные декапсуляции небольших количеств яиц (например, в бюксах). Приготавливать пробные декапсулирующие растворы следует начинать с расчетных концентраций: гипохлорита кальция — 3 %, хлорной извести — 6 %, гипохлорита натрия — 9 %. Декапсулировать можно только хорошо набухшие яйца артемии, находившиеся в воде не менее 1 ч. Соотношение объемов набухших яиц и декапсулирующего раствора Г.5.

Все отцеживающие приспособления, применяемые в процессе декапсуляции (сачки, вкладыши в емкости для обработки яиц и др.), должны быть изготовлены из капронового сита. Шелковое не годится, так как гипохлорит быстро растворяет этот материал. Посуда и другой инвентарь, применяющийся при декапсуляции, должны быть изготовлены из материалов, стойких к коррозии.

Хранить химикаты, содержащие активный хлор, необходимо в заводской упаковке в неотапливаемых закрытых затемненных и хорошо вентилируемых помещениях. Нельзя хранить в том же помещении взрывчатые и огнеопасные вещества, смазочные масла, металлические изделия, баллоны со сжатыми газами.

Все работы по приготовлению растворов и декапсуляции яиц артемии следует производить в помещении, оборудованном приточно-вытяжной вентиляцией.

Процесс декапсуляции хорошо контролируется визуально: погруженные в раствор и перемешиваемые яйца артемии меняют цвет от коричневого до оранжевого. Если обработка производится в стационарных условиях, удобно контролировать ход декапсуляции под бинокуляром: процесс прекращают, когда на поверхности яиц не останется следов хориона в виде расплывчатых пятен белого цвета.

Частичная механизация процесса декапсуляции яиц легко осуществима при использовании выполненных из оргстекла больших аппаратов ВНИИПРХ с конусным дном. В них заливают декапсулирующий раствор, помещают шланг с диффузором, затем подают сжатый воздух, загружают набухшие яйца артемии. Интенсивность подачи сжатого воздуха должна быть достаточной для того, чтобы яйца находились в движении, а не лежали на стенках конуса. Обработка легко контролируется визуально через прозрачные стенки емкости. Возможно использование в таких аппаратах вкладышей из капронового сита, в которые помещены обрабатываемые яйца. Такие вкладыши облегчают и ускоряют загрузку и выгрузку яиц, а также их промывку.

По завершении процесса декапсуляции отцеженные яйца следует промыть в проточной воде. Ускорить этот процесс можно, обработав декапсулированные яйца раствором «антихлоров», например, сульфита или тиосульфата натрия.

Е. ГУСЕВ

ВНИИР